Genetyka molekularna
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | 1400-215GEBM |
Kod Erasmus / ISCED: |
13.104
|
Nazwa przedmiotu: | Genetyka molekularna |
Jednostka: | Wydział Biologii |
Grupy: |
Przedmioty DOWOLNEGO WYBORU Przedmioty KIERUNKOWE, BIOLOGIA, I stopień Przedmioty obieralne na studiach drugiego stopnia na kierunku bioinformatyka |
Punkty ECTS i inne: |
6.00
|
Język prowadzenia: | polski |
Kierunek podstawowy MISMaP: | biologia |
Rodzaj przedmiotu: | fakultatywne |
Wymagania (lista przedmiotów): | Genetyka z inżynierią genetyczną 1400-114GEN |
Założenia (lista przedmiotów): | Genetyka z inżynierią genetyczną 1400-114GEN |
Założenia (opisowo): | Student powinien posiadać umiejętność: 1. posługiwania się pipetami automatycznymi; 2. pracy w warunkach jałowych i semijałowych; 3. rozdziału DNA przez elektroforezę w żelach agarozowych; 4. doboru wektorów odpowiednich dla zamiaru badawczego, w szczególności klonowania DNA; 5. rozróżnienia kwasów nukleinowych z uwagi na ich specyficzne właściwości fizyko-chemiczne; 6. określenia techniki PCR odpowiedniej dla zamierzonego celu badawczego; 7. zastosowania wiedzy zdobytej w trakcie realizacji przedmiotu 1400-114GEN. |
Tryb prowadzenia: | w sali |
Skrócony opis: |
Ćwiczenia praktyczne ze wstępem teoretycznym dotyczącym stosowanych metod molekularnych. I. Zagadnienia z komputerowej analizy kwasów nukleinowych. II. Technika PCR i analiza wybranych sekwencji DNA. III. Konstrukcja kasety do ekspresji ludzkiego białka w komórkach E. coli (system pET). Zajęcia obejmują techniki inżynierii genetycznej takie jak: PCR, elektroforeza fragmentów DNA, klonowanie produktu PCR, elektroporacja i transformacja bakterii chemokompetentnych, izolacja plazmidowego DNA, mapy restrykcyjne, sekwencjonowanie DNA, ukierunkowana mutageneza. IV. Konstrukcja szczepów drożdży zawierających w genomach sekwencje kodujące wybrane białka jako fuzje ze znacznikiem TAP: uzyskanie kasety do rekombinacji in vivo (PCR), transformacja drożdży, analiza transformantów (PCR, analiza western). V. Analiza RNA z mutantów drożdży związanych z dojrzewaniem RNA: izolacja RNA, rozdział RNA w żelach, znakowanie kwasów nukleinowych, technika northern. IV. RT-PCR, ilościowy PCR. |
Pełny opis: |
1. Wybrane metody komputerowej analizy DNA. Omówienie najczęściej wykorzystywanych w biologii molekularnej baz danych, metod przeszukiwania za pomocą słów kluczowych i przez porównywanie sekwencji, podstawy porównywania sekwencji i tworzenia przyrównań lokalnych i globalnych. Wyszukiwanie informacji i sekwencji w bazach danych, analiza wyników sekwencjonowania, posługiwanie się serwerem BLAST, program Clustal. Blok I: Otrzymywanie konstruktu dla ekspresji białka w układzie heterologicznym. 2. Omówienie doświadczenia, komputerowe metody projektowania doświadczeń w biologii molekularnej. Projektowanie klonowania w programie Serial Cloner, przewidywanie wyników analizy restrykcyjnej konstruktu. 3. Omówienie wektorów do ekspresji w układach heterologicznych. Klonowanie DNA: PCR, elektroforeza produktu PCR i jego trawienie endonukleazą restrykcyjną. Ligacja DNA. 4. Metody transformacji E. coli. Analiza ligacji i transformacja bakterii + przygotowanie bakterii chemokompetentnych (BL21). 5. Analiza transformantów: mikrolizaty + elektroforeza. 6. Sekwencjonowanie DNA. Endonukleazy restrykcyjne i inne enzymy stosowane w klonowaniu i analizie DNA. Mapy restrykcyjne. Analiza transformantów (analiza restrykcyjna mikrolizatów). Omówienie wyników transformacji. Analiza restrykcyjna konstruktów, mapy restrykcyjne, podsumowanie wyników klonowania. Blok II: Otrzymywanie białek chimerowych w drożdżach - rekombinacja in vivo. 7. Oczyszczanie białek przez tandemową chromatografię powinowactwa (TAP). Sposoby konstruowania szczepów drożdży zawierających w genomach sekwencje kodujące wybrane białka ze znacznikiem do TAP. Uzyskanie przez PCR kasety do rekombinacji in vivo. Transformacja drożdży. 8. Analiza transformantów, genotypowanie. 9. Technika western. Blok III: Analiza RNA. 10. Izolacja RNA, elektroforeza RNA, technika northern. Analiza RNA z mutantów drożdży związanych z dojrzewaniem RNA. 11. Sondy molekularne, znakowanie kwasów nukleinowych. 12. RT-PCR - teoria odwrotnej transkrypcji (warianty metody, enzymy). Przeprowadzenie reakcji odwrotnej transkrypcji. 13. Real time PCR (RT-qPCR). Teoretyczne podstawy RT-qPCR, sposoby analizy wyników RT-qPCR. Analiza produktów RT-PCR w żelu i omówienie wyników. |
Literatura: |
Skrypt do fakultetu "Biologia molekularna"; T. Brown "Genomy"; Lizabeth A. Allison "Podstawy biologii molekularnej". |
Efekty uczenia się: |
1. Wybiera i stosuje techniki i narzędzia badawcze odpowiednie dla analizy organizacji i ekspresji informacji genetycznej 2. Wybiera i stosuje techniki odpowiednie dla otrzymywania konstruktów dla wytwarzania białek w układach heterologicznych 3. Potrafi pod nadzorem opiekuna planować eksperymenty z zakresu biologii molekularnej, w szczególności otrzymywanie konstruktów DNA dla ekspresji białek w E. coli 4. Potrafi posługiwać się podstawowymi metodami analizy kwasów nukleinowych in silico 5. Potrafi projektować eksperymenty wykorzystujące metody PCR, qPCR i RT-PCR do analizy kwasów nukleinowych 6. Potrafi otrzymać konstrukt DNA dla ekspresji białek w układach heterologicznych 7. Potrafi otrzymać kompetentne bakterie E.coli i wprowadzić do nich uzyskane konstrukty DNA 8. Potrafi opracować i krytycznie przeanalizować wyniki amplifikacji i klonowania fragmentów DNA 9. Potrafi konstruować szczepy drożdży zawierające w genomach sekwencje kodujące wybrane białka jako fuzje ze znacznikiem TAP oraz zweryfikować ich poprawność oraz funkcjonalność 10. Potrafi wykonać analizę RNA z drożdży, w szczególności ze szczepów z mutacjami zaburzającymi dojrzewanie RNA 11. Potrafi zaprojektować i wykonać reakcje RT-PCR 12. Potrafi pracować w 2-3 osobowym zespole 13. Wykazuje inicjatywę i samodzielność w czasie projektowania i wykonywania eksperymentów oraz potrafi samodzielnie myśleć analizując uzyskane wyniki 14. Wykazuje odpowiedzialność za realizowany projekt badawczy [K_K03] 15. Dostrzega konieczność stosowania zaawansowanych metod analizy wyników 16. Zna zaawansowane techniki analizy organizacji kwasów nukleinowych i ekspresji informacji genetycznej 17. Zna zasady planowania prostych eksperymentów z zakresu biologii molekularnej 18. Zna zasady BHP w laboratorium, w tym dotyczące pracy z materiałem promieniotwórczym Symbole efektów uczenia się dla kierunku biologia, studia I stopnia: K_W01, K_W02, K_W03, K_W10, K_W12, K_W14, K_W17, K_W19, K_U01, K_U03, K_U04, K_U05, K_U08, K_U09, K_K01, K_K03, K_K04, K_K05, K_K07 Symbole efektów uczenia się dla kierunku biotechnologia, studia I stopnia: K_W01, K_W04, K_W08, K_W09, K_W11, K_U01, K_U03, K_U04, K_U05, K_U06, K_K01, K_K02, K_K03, K_K04 |
Metody i kryteria oceniania: |
Podstawą zaliczenia jest ocena zdobytych przez studenta umiejętności planowania i krytycznej analizy uzyskanych wyników eksperymentów dokonana na podstawie: 1. egzaminu zaliczeniowego; warunkiem przystąpienia do egzaminu jest zaliczenie sprawdzianów z bloku I i II ćwiczeń. 3. udziału w zajęciach, zgodnie z regulaminem studiów UW |
Praktyki zawodowe: |
1400-114GEN, lub jego odpowiednika w przypadku studentów, którzy zajęcia z genetyki odbyli na innych uczelniach. |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2024/25" (zakończony)
Okres: | 2024-10-01 - 2025-01-26 |
Przejdź do planu
PN LAB
WT ŚR LAB
CZ PT LAB
|
Typ zajęć: |
Laboratorium, 90 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Monika Zakrzewska-Płaczek | |
Prowadzący grup: | Łukasz Borowski, Anna Golisz-Mocydlarz, Michał Koper, Konrad Kosicki, Karolina Łabędzka-Dmoch, Tomasz Wilanowski, Monika Zakrzewska-Płaczek | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Egzamin
Laboratorium - Egzamin |
|
Uwagi: |
Warunki przyjęcia: PRZEDMIOT KIERUNKOWY I DOW. WYBORU DLA STUDENTÓW I STOPNIA Zajęcia obowiązkowe dla studentów przyjętych na licencjat do Instytutu Genetyki i Biotechnologii. Dla pozostałych osób przyjęcie wg. oceny z ćwiczeń i egzaminu z Genetyki z inżynierią genetyczna. Link do formularza: https://forms.gle/4stMHmrscT75YhXW6 |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2025/26" (jeszcze nie rozpoczęty)
Okres: | 2025-10-01 - 2026-01-25 |
Przejdź do planu
PN LAB
WT ŚR LAB
CZ PT LAB
|
Typ zajęć: |
Laboratorium, 90 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Monika Zakrzewska-Płaczek | |
Prowadzący grup: | Łukasz Borowski, Anna Golisz-Mocydlarz, Michał Koper, Konrad Kosicki, Karolina Łabędzka-Dmoch, Tomasz Wilanowski, Monika Zakrzewska-Płaczek | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Egzamin
Laboratorium - Egzamin |
|
Uwagi: |
Warunki przyjęcia: PRZEDMIOT KIERUNKOWY I DOW. WYBORU DLA STUDENTÓW I STOPNIA Zajęcia obowiązkowe dla studentów przyjętych na licencjat do Instytutu Genetyki i Biotechnologii. Dla pozostałych osób przyjęcie wg. oceny z ćwiczeń i egzaminu z Genetyki z inżynierią genetyczna. Link do formularza: https://forms.gle/ZdAaojRjWH6Be8hKA |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Warszawski.